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慢病毒包装

更新时间:2019-05-28

简要描述:

慢病毒包装在基因功能的研究过程中,通过使用慢病毒介导的方法能够大大提高基因的转导效率,达到目的基因高效表达的目的。慢病毒主要应用于shRNA、LncRNA、cDNA以及报告基因的研究,慢病毒包装具有以下特点:1)适用于难转染的细胞,如干细胞、原代细胞等,可很大程度的提高基因转导效率。2)慢病毒整合细胞基因组,可进行稳转细胞株的筛选。3)高纯度的慢病毒可用于活体动物模型。

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慢病毒包装

慢病毒表达质粒包含了包装、感染、稳定整合宿主细胞基因组所需的遗传信息,包装辅助质粒则提供了所有的转录、包装和重组假病毒所需要的辅助蛋白。为产出高滴度的病毒颗粒,通常将表达质粒和包装质粒共同转染至包装细胞中进行病毒的包装。包装好的假病毒颗粒分泌到细胞外培养液中。通过收集含病毒颗粒的上清,进行浓缩和纯化可获得高纯度和高滴度的慢病毒。

慢病毒包装实验步骤

1、转染前1天,将293T细胞接种于10 CM培养皿中,加入15 mL10FBSDMEM培养液,置37℃,5CO2培养至约70-80%融合时,进行细胞转染。

2、转染293T细胞

1)将慢病毒表达质粒和包装质粒加入到Opti-MEM中,混匀。

2)将适量的Lipofectamine 2000 (invitrogen)加入到Opti-MEM中,混匀。

3)5分钟后,将上述两混合液混匀,室温静置20分种后,将混合液加入至培养皿中,前后左右晃动摇匀。置37℃,5%CO2培养箱中培养。

3、6小时后,换含10FBSDMEM培养液10mL。

4、转染48小时后,收集病毒上清,500g离心10分钟,0。45 μm滤器过滤。

5、浓缩纯化后,分装,-80℃保存。

我们提供

已测定好滴度,可以直接进行后续实验的慢病毒液、实验报告。

质量保证 

慢病毒液可用于感染目的细胞。

活性滴度5×108 TU/ml。

 

 

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